System sekrecji typu IV (T4SS) zwany Dot/Icm stanowi jeden z najważniejszych czynników zjadliwości Legionella pneumophila i jest niezbędny do replikacji wewnątrzkomórkowej oraz tworzenia wakuoli zawierającej Legionella (LCV)1. Ten zaawansowany aparat molekularny pozwala bakteriom na translokację setek białek efektorowych bezpośrednio do cytoplazmy komórki gospodarza, gdzie modulują one kluczowe procesy komórkowe na korzyść patogenu2.
System Dot/Icm jest zaangażowany nie tylko w replikację wewnątrzkomórkową i tworzenie LCV, ale również w wnikanie bakterii do komórek, hamowanie apoptozy komórek gospodarza oraz wyjście L. pneumophila z komórek gospodarza1. Ta wielofunkcyjność czyni go centralnym elementem strategii patogennej bakterii.
Charakterystyka systemu Dot/Icm
Efektory Dot/Icm stanowią około 10% proteomu L. pneumophila, co sugeruje, że są one głównym determinantem przetrwania bakterii i że selekcja na rzecz ich retencji jest silna1. Genom L. pneumophila koduje kilka domniemanych białek efektorowych Dot/Icm z motywami eukariotycznymi, które funkcjonują w eukariotycznym szlaku ubiwitynacji1.
Najnowsze badania wykazały, że system ten można porównać do „pistoletu toksyn” (Toxin Gun), który jest odpowiedzialny za odnotowaną oporność bakterii na niektóre antybiotyki3. Pistolet toksyn wydziela tysiące toksycznych cząsteczek, które zakażają i znacząco osłabiają komórki, przeciążając odpowiedź immunologiczną organizmu3. Dodatkowo wydziela materiał zakodowany genami oporności na antybiotyki, umożliwiając tworzenie większej liczby bakterii opornych na niektóre formy antybiotyków3.
Białka efektorowe i ich funkcje
Bakterie Legionella pneumophila uwalniają od 300 do 400 białek – „robotniczych pszczół zakażenia” wysyłanych do wykonywania zadań bakterii4. Te białka przeprogramowują maszynerię transportu komórkowego gospodarza w bardzo interesujący sposób4. Normalnie, gdy makrofag pochłania bakterie, komórki nowotworowe lub agregaty białkowe, są one transportowane do przedziału w komórce zwanego lizosomem, gdzie zostają strawione i usunięte4.
W przypadku Legionella, bakterie zapobiegają temu transportowi, przebudowują szlak i wykorzystują część maszynerii komórkowej do utworzenia ochronnej kapsułki4. Wewnątrz tej ochronnej bańki bakterie replikują się, rosną i ostatecznie przejmują komórkę i ją zabijają5.
Regulatory białek efektorowych – system SidE/SidJ
Jednym z najbardziej fascynujących odkryć w zakresie patogenezy legionellozy jest wyjaśnienie mechanizmu regulatora SidJ6. W celu kontrolowania procesów komórkowych i udaremniania układu immunologicznego, bakteria Legionella pneumophila uwalnia setki enzymów6. Badacze odkryli, jak regulatorowy enzym SidJ utrzymuje w ryzach inne niebezpieczne czynniki zjadliwości6.
To, co czyni Legionella tak niebezpieczną, to jej zdolność do rozmnażania w fagocytach układu immunologicznego poprzez wydzielanie czynników zjadliwości6. Jednak ponieważ Legionella potrzebuje komórek gospodarza do rozmnażania, opracowała wyrafinowany mechanizm precyzyjnego dozowania aktywności enzymu SidE6.
Wykazano, że regulator SidJ, również uwalniany przez Legionella, działa jako antidotum na enzymy SidE, zapewniając w ten sposób precyzyjną kontrolę aktywności SidE6. Regulator SidJ to glutamylaza, czyli ma rzadką aktywność enzymatyczną, która pozwala na łączenie aminokwasów glutaminianów w łańcuchy7. W tym przypadku SidJ atakuje centralny glutaminian enzymów SidE i hamuje ich aktywność7.
Modulacja szlaków komórkowych gospodarza
Zdolność L. pneumophila do ustanowienia i utrzymania tej niszy wewnątrzkomórkowej wskazuje, że bakterie aktywnie i stale manipulują transportem komórkowym gospodarza z wnętrza wakuoli replikacyjnej8. LCV specyficznie rekrutuje Rab1, ale nie Rab2 czy Rab6, do LCV w ciągu minut od wchłonięcia, poprzedzając jakąkolwiek przebudowę wakuoli8.
Inne dowody sugerują, że manipulacja autofagii przez L. pneumophila jest ważna dla replikacji bakteryjnej1. Mechanizmy zaangażowane obejmują: apoptozę, autofagię, dynamikę mitochondrialną i biosyntezę fosfolipidów9. Gatunki Legionella wpływają na liczne procesy komórkowe eukariontów, charakteryzując się zdolnością do translokacji ponad 300 białek efektorowych do makrofagów gospodarza10.
System sekrecji typu II (T2SS)
Oprócz systemu Dot/Icm, L. pneumophila posiada również system sekrecji typu II (T2SS) zwany Lsp (Legionella secretion pathway), który jest wymagany do pełnej zjadliwości i persystencji środowiskowej1. System ten współpracuje z systemem Dot/Icm w zapewnieniu kompleksowej strategii patogennej bakterii.
Zdolność L. pneumophila do pozostawania żywotną w szerokim zakresie warunków jest fundamentalna dla jej persystencji środowiskowej11. Dwufazowy cykl wzrostu, w którym w warunkach bogatych w składniki odżywcze bakterie znajdują się w fazie replikacyjnej i wyrażają niewiele cech zjadliwości, ale w warunkach ograniczonych składników odżywczych bakterie wchodzą w fazę transmisyjną i stają się wysoce ruchliwe i odporne na różne stresy11.
Regulacja genów i małe RNA
Najnowsze odkrycia ujawniły, że Legionella pneumophila posiada duże repozytorium białek efektorowych, które naśladują funkcje komórek gospodarza i są wykorzystywane przez patogen do manipulacji szlakami sygnałowymi gospodarza na korzyść patogenu1213.
Badacze odkryli, że te dwa bakteryjne RNA, nazwane RsmY i tRNA-Phe, funkcjonują w komórce gospodarza w sposób podobny do mikroRNA12. Obniżają one ekspresję RIG-I, białka w komórce, które wykrywa obce cząsteczki RNA w celu zainicjowania odpowiedzi immunologicznej12. Obniżenie ekspresji RIG-I prowadzi do osłabienia odpowiedzi immunologicznej gospodarza i lepszej replikacji Legionella pneumophila12.
Amylaza LamB jako czynnik zjadliwości
Wśród unikalnych czynników zjadliwości L. pneumophila szczególną uwagę zwraca amylaza LamB14. Mimo minimalnej roli glukozy w metabolizmie L. pneumophila, amylaza LamB jest zaskakująco niezbędna do replikacji wewnątrzkomórkowej w amebach i makrofagach ludzkich oraz jest wymagana do zjadliwości in vivo w modelu myszy A/J15.
Wśród 60 gatunków Legionella, L. pneumophila i L. steigerwaltii to jedyne dwa gatunki Legionella, które posiadają gen lamB15. Utrata LamB lub ekspresja katalitycznie nieaktywnych wariantów LamB powoduje ciężki defekt wzrostu L. pneumophila w Acanthamoeba polyphaga i makrofagach pochodzących z monocytów ludzkich14.
Co ważne, mutant bez genu lamB jest poważnie osłabiony w proliferacji wewnątrzpłucnej w modelu myszy i wykazuje defekty w rozprzestrzenianiu się do wątroby i śledziony14. Te dane pokazują zasadniczą rolę LamB w replikacji wewnątrzkomórkowej L. pneumophila w amebach i makrofagach ludzkich oraz w zjadliwości in vivo14.
Perspektywy terapeutyczne
Zrozumienie mechanizmów działania białek efektorowych i systemów sekrecji otwiera nowe możliwości badawcze nad hamowaniem rozprzestrzeniania się Legionella w organizmie gospodarza7. Badacze obecnie pracują nad selektywnym eliminowaniem SidJ poprzez opracowywanie inhibitorów dla domeny glutamylazy7.
Badania z wykorzystaniem narzędzia edycji genów CRISPR-Cas9 ujawniły nowe wskazówki genetyczne od gospodarza, które pokazują, jak bakterie się umacniają4. Te geny mogłyby potencjalnie wskazywać na nowe drogi dla celów lekowych5. Wyniki badań sugerują, że możliwe może być celowanie w geny komórki gospodarza w celu uzyskania efektów terapeutycznych przeciwko bakteriom5.
Ta wiedza nie tylko ujawnia nowe cele, które mogą być wykorzystane do projektowania inhibitorów, ale także pokazuje nam mechanizmy molekularne, które mogą być readaptowane i wykorzystane, na przykład w selektywnym transporcie cząsteczek do celów terapeutycznych16.














