Molekularne mechanizmy inicjacji oponiaka stanowią złożony proces, w którym kluczową rolę odgrywa inaktywacja jednego lub więcej członków wysoce konserwowanej nadrodziny białek 4.1. Obecne dane wskazują, że inicjacja oponiaka jest ściśle związana z inaktywacją produktu genu neurofibromatozy typu 2 – białka merliny/schwannominy, białka 4.1B (DAL-1) oraz białka 4.1R1.
Struktura i funkcja białka merliny
Gen NF2, zlokalizowany na chromosomie 22q12, koduje białko merlina (zwane również schwannominą), które należy do rodziny białek BAND 4.1 FERM. Merlina jest białkiem szkieletowym, które łączy błonę plazmatyczną z cytoszkieletem aktynowym i pośredniczy w kontaktowym hamowaniu proliferacji2. Białko to odgrywa fundamentalną rolę w utrzymaniu architektury komórkowej oraz kontroli wzrostu komórek poprzez regulację sygnałów pochodzących z powierzchni komórkowej.
Mutacje związane z oponikami w genie NF2 powszechnie prowadzą do powstania skróconego, niefunkcjonalnego białka, co może prowadzić do nieprawidłowego wzrostu i ruchliwości komórek poprzez destabilizację połączeń adherentnych3. Główną charakterystyką komórek pozbawionych białka NF2 jest utrata kontaktowego hamowania proliferacji komórkowej4.
Mechanizmy inaktywacji genu NF2
Inaktywacja genu NF2 następuje zgodnie z klasyczną hipotezą dwóch uderzeń dla genów supresorowych nowotworów. Około 40-70% sporadycznych oponiaków wykazuje alleliczne ubytki w regionie chromosomalnym 22q12.2, gdzie kodowany jest gen NF25. Dodatkowo, do 60% tych oponiaków niesie inaktywujące mutacje w pozostałym allelu NF2, co jest zgodne z klasyczną hipotezą dwóch uderzeń inaktywacji genów supresorowych nowotworów5.
Dotychczas zgłoszono szereg mutacji NF2 w oponiakach, z których większość składa się z małych insercji, delecji lub mutacji nonsensownych wpływających na miejsca splicingu5. Ponieważ częstość mutacji NF2 jest w przybliżeniu równa wśród różnych stopni WHO, uważa się ją za istotną zmianę genetyczną w inicjacji nowotworu, a nie w progresji złośliwej3.
Konsekwencje utraty funkcji merliny
Utrata aktywności merliny została powiązana ze zwiększonym poziomem receptorów ErbB w pierwotnych komórkach Schwanna, które regulują mitogenne szlaki sygnałowe (np. Ras/Raf/MEK/ERK i PI3K/AKT). Wszystkie te odkrycia wspierają istotną rolę merliny w tumorygenezie oponiaków4.
Zgodnie z tą hipotezą, myszy heterozygotyczne pod względem mutacji NF2 częściej rozwijają nowotwory przerzutowe, a zarówno in vivo, jak i in vitro ponowna ekspresja dzikiego typu merliny prowadzi do zmniejszonego wzrostu nowotworu i zmniejszonej ruchliwości komórek4. Ponieważ funkcje merliny obejmują łączenie białek błonowych z cytoszkieletem, wysunięto hipotezę, że zmiany w merlinie mogą znacząco wpływać na kształt komórki i mogą sprzyjać pojawieniu się fenotypu bardziej mezenchymalnego niż epitelioidalnego4.
Szlaki sygnałowe regulowane przez merlinę
Merlina reguluje hamowanie proliferacji zależne od kontaktu komórkowego poprzez ograniczanie dostarczania kilku receptorów czynników wzrostu (np. ErbB2, ErbB3, IGF1R i PDGFR) do błony plazmatycznej pierwotnych komórek Schwanna, a tym samym hamuje aktywność mitogennych szlaków sygnałowych6.
Niedawno zidentyfikowano merlinę jako negatywny regulator mTORC1, a James i współpracownicy wykazali, że poziomy mTORC1 są podwyższone w nowotworach pochodzących od pacjentów z chorobą NF2 oraz w fibroblastach z modelu myszy z niedoborem NF27. Aktywacja mTORC1 została powiązana ze wzrostem oponiaka, a inhibitory mTORC1 wykazały zdolność do hamowania wzrostu oponiaka w modelach myszy7.
W przeciwieństwie do swoich efektów na mTORC1, merlina pozytywnie reguluje aktywność kinazową mTORC2, przy czym fosforylacja substratów mTORC2, w tym AKT, jest zmniejszona w przypadku ostrego niedoboru merliny w komórkach7.
Rola innych członków rodziny białek 4.1
Oprócz merliny, w patogenezie oponiaków biorą udział inne członkowie rodziny białek 4.1. Białko 4.1B jest uważane za supresor nowotworów i zostało zaangażowane w patogenezę oponiaka8. Utrata DAL-1, białka związanego z 4.1, jest ważnym wczesnym zdarzeniem w patogenezie oponiaków9.
Badania wykazały również, że inny członek rodziny białek 4.1, białko 4.1R, również funkcjonuje jako supresor nowotworów oponiaka. Wyniki sugerują, że białko 4.1R pełni funkcję ważnego supresora nowotworów istotnego w molekularnej patogenezie oponiaka10.
Mechanizmy regulacji szlaku Wnt/β-katenina
Szlak sygnałowy wingless (Wnt)/β-katenina został również zaangażowany w progresję oponiaka poprzez zmienioną ekspresję kilku jego genów. Wczesne badania oparte na profilowaniu ekspresji genów metodą microarray zidentyfikowały zwiększoną ekspresję genów takich jak CTNNB1, CDK5R1, ENC1 i CCND111.
Zhou i współpracownicy zasugerowali model, w którym aktywna merlina hamowałaby sygnalizację Wnt/β-katenina i utrzymywała kompleks β-kateniny i N-kadheryny w błonie plazmatycznej. Utrata merliny prowadziłaby następnie do utraty hamowania kontaktowego i aktywacji sygnalizacji Wnt/β-katenina, translokacji β-kateniny do jądra i ekspresji wewnątrzkomórkowych białek związanych ze wzrostem, takich jak c-myc i cyklina D111.
Implikacje terapeutyczne
Zrozumienie mechanizmów molekularnych zaangażowanych w inicjację oponiaka otwiera nowe możliwości terapeutyczne. Identyfikacja kluczowych szlaków sygnałowych regulowanych przez merlinę oraz innych członków rodziny białek 4.1 może prowadzić do opracowania ukierunkowanych terapii molekularnych. Szczególnie obiecujące wydają się inhibitory szlaku mTOR, które wykazały skuteczność w modelach przedklinicznych.
Lepsze zrozumienie mechanizmów molekularnych zaangażowanych w patogenezę oponiaków może nie tylko prowadzić do identyfikacji nowych markerów diagnostycznych i prognostycznych, ale także ułatwić rozwój nowych strategii terapeutycznych opartych na patogenezie1.

















