Badania laboratoryjne w diagnostyce cytomegalii – kompleksowy przewodnik

Diagnostyka cytomegalii wymaga zastosowania różnorodnych metod laboratoryjnych dostosowanych do konkretnej sytuacji klinicznej i stanu pacjenta. Wirus cytomegalii może być wykrywany bezpośrednio lub pośrednio poprzez oznaczanie przeciwciał, a wybór odpowiedniego testu zależy od wieku pacjenta, stanu układu immunologicznego oraz celu diagnostycznego12.

Ważne: Diagnostyka cytomegalii jest szczególnie istotna u noworodków, kobiet ciężarnych oraz osób z osłabionym układem immunologicznym. Wczesne rozpoznanie pozwala na odpowiednią opiekę medyczną i zapobieganie powikłaniom.

Podstawowe metody diagnostyczne

Współczesna diagnostyka cytomegalii obejmuje kilka głównych grup testów laboratoryjnych. Badania serologiczne wykrywają przeciwciała przeciwko wirusowi CMV w surowicy krwi i są najczęściej stosowaną metodą u dorosłych pacjentów3. Test ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) stanowi najczęściej używaną metodę serologiczną do pomiaru przeciwciał przeciwko CMV3.

Metody molekularne, szczególnie reakcja łańcuchowa polimerazy (PCR), umożliwiają bezpośrednie wykrywanie materiału genetycznego wirusa w różnych próbkach biologicznych4. PCR może być prowadzona jako test jakościowy (wykrywający obecność wirusa) lub ilościowy (określający ilość wirusowego DNA w próbce)4. Ta metoda charakteryzuje się wysoką czułością i swoistością, co czyni ją szczególnie przydatną w diagnostyce u pacjentów immunokompromitowanych5.

Hodowla wirusowa pozostaje klasyczną metodą diagnostyczną, choć ze względu na długi czas oczekiwania na wyniki została w dużej mierze zastąpiona przez szybsze metody molekularne4. Modyfikacją tej techniki jest test shell vial, który wykorzystuje technikę amplifikacji przez wirowanie w celu skrócenia czasu potrzebnego do szybkiego wykrycia wirusa4.

Diagnostyka serologiczna u dorosłych

Badania serologiczne odgrywają kluczową rolę w diagnostyce cytomegalii u immunokompetentnych dorosłych pacjentów. Oznaczanie przeciwciał IgG przeciwko CMV wskazuje na przebytą infekcję w dowolnym momencie życia, ale nie określa czasu zakażenia3. Pomiar CMV IgG w parowanych próbkach pobranych w odstępie od jednego do trzech miesięcy może być wykorzystany do rozpoznania pierwotnego zakażenia6.

Przeciwciała IgM przeciwko CMV pojawiają się wcześnie w przebiegu infekcji, jednak ich obecność nie może być sama w sobie wykorzystana do rozpoznania pierwotnego zakażenia CMV, ponieważ IgM może być również obecne podczas wtórnego zakażenia CMV6. Dlatego też interpretacja wyników testów serologicznych wymaga uwzględnienia całości obrazu klinicznego i wyników innych badań7.

Testy awidiności IgG mierzą siłę wiązania między przeciwciałami IgG a wirusem, co może pomóc w odróżnieniu pierwotnego zakażenia CMV od przebytej infekcji6. Ta metoda jest szczególnie przydatna u kobiet ciężarnych z podejrzeniem pierwotnego zakażenia8.

Metody molekularne i wykrywanie antygenu

Test antygenii pp65 jest powszechnie stosowany od ponad dekady do ilościowego oznaczania wirusa CMV w próbkach krwi4. Test wykrywa białko pp65 w wielojądrzastych leukocytach i jest wykorzystywany do diagnozowania infekcji CMV oraz monitorowania leczenia u pacjentów immunokompromitowanych9. Wadami tego testu są jego pracochłonność, niska przepustowość i brak możliwości automatyzacji4.

Ilościowa PCR w czasie rzeczywistym stała się preferowaną metodą wykrywania CMV u pacjentów immunokompromitowanych, ponieważ umożliwia szybkie i wczesne wykrywanie, oferuje wyższą czułość niż hodowla i pozwala na ilościowe określenie obciążenia wirusowego5. Badania wykazały, że ilościowa PCR w czasie rzeczywistym dla DNA CMV może być używana zamiast testu antygenii do monitorowania infekcji CMV i określania czasu rozpoczęcia leczenia wyprzedzającego10.

Uwaga kliniczna: Brak standaryzowanych protokołów PCR w czasie rzeczywistym utrudnia porównywanie danych między różnymi ośrodkami i opracowanie jednolitych wytycznych dotyczących postępowania w przypadku inwazyjnych infekcji CMV u osób immunokompromitowanych.

Diagnostyka u noworodków i niemowląt

Rozpoznanie wrodzonej cytomegalii wymaga bezpośredniego wykrycia wirusa w próbkach pobranych od noworodka w ciągu pierwszych trzech tygodni życia1112. Standardowym testem laboratoryjnym do diagnozowania wrodzonej infekcji CMV jest PCR śliny z testem potwierdzającym na moczu3. Ślina jest łatwiejsza do pobrania niż krew lub mocz i jest preferowaną próbką do testowania PCR wrodzonej CMV12.

Wykrywanie CMV w ślinie i moczu niemowląt jest łatwe, ponieważ noworodki z wrodzoną infekcją CMV wydalają duże ilości wirusa9. Metody serologiczne są niepewne w diagnostyce wrodzonej infekcji9. Testowanie później niż trzy tygodnie po urodzeniu nie pozwala odróżnić zakażenia wewnątrzmacicznego od okołoporodowego13.

Ze względu na możliwe wyniki fałszywie dodatnie u dzieci karmionych piersią, zaleca się pobranie próbki śliny co najmniej godzinę po karmieniu, aby uniknąć potencjalnego skażenia CMV z mleka matki13. Obecnie testowanie noworodków pod kątem CMV nie jest rutynowo przeprowadzane, chociaż niektóre stany wykonują ukierunkowane testy CMV u noworodków, które nie przeszły badania przesiewowego słuchu3.

Diagnostyka prenatalna

Wykrywanie CMV w płynie owodniowym jest standardem diagnostyki infekcji płodu9. Wraz z pojawieniem się PCR wykrywanie DNA CMV w płynie owodniowym wykazało poprawę prenatalnej diagnostyki wrodzonej infekcji CMV9. Najwyższa czułość tego testu (90-100%) została wykazana, gdy próbki płynu owodniowego są pobierane po 21. tygodniu ciąży i co najmniej 6 tygodni po pierwszym dodatnim teście serologicznym matki9.

Diagnostyka ostrego zakażenia matczynego CMV poprzez obecność IgM i niską awidiność IgG wymaga potwierdzenia infekcji płodowej, która jest zwykle wykonywana przez CMV PCR płynu owodniowego14. Jeśli zostanie wykryte zakażenie matczyne lub podejrzewana infekcja płodowa na podstawie wyników USG, CMV można wykryć w płynie owodniowym zakażonych płodów metodą hodowli lub PCR15.

Diagnostyka u pacjentów immunokompromitowanych

U pacjentów z osłabionym układem immunologicznym diagnostyka cytomegalii wymaga szczególnego podejścia. Ilościowa amplifikacja kwasów nukleinowych (NAAT, np. qPCR) jest preferowana do monitorowania obciążenia wirusowego i odpowiedzi na leczenie przeciwwirusowe u biorców przeszczepów16. Po przeszczepieniu zaleca się ilościową NAAT wykonywaną na osoczu lub pełnej krwi w celu badania przesiewowego pod kątem infekcji CMV u osób z grupy ryzyka, prowadzenia leczenia wyprzedzającego, diagnozowania aktualnej infekcji i monitorowania odpowiedzi na terapie przeciwwirusowe5.

U pacjentów immunokompromitowanych niski lub umiarkowany poziom antygenii CMV może wskazywać na reaktywację lub infekcję17. Zgłaszano, że test antygenu pp65 i ilościowa CMV PCR wykazują podobną skuteczność w diagnozowaniu i monitorowaniu pacjentów z aktywną infekcją CMV17.

Gdy podejrzewana jest oporność na leczenie przeciwwirusowe (niepowodzenie terapii dożylnym gancyklowirem lub walgancyklowirem), wytyczne konsensusu zalecają testowanie pod kątem wariantów przyczynowych w genach UL97 i UL541819. Mutacja UL54 jest związana z opornością na gancyklowir i krzyżową opornością na cidofowir, podczas gdy mutacja UL97 również jest związana z opornością na gancyklowir19.

Nowoczesne techniki diagnostyczne

Rozwijane są nowoczesne techniki diagnostyczne mające na celu poprawę czułości, swoistości i dostępności testów CMV20. Cyfrowa PCR (dPCR) może być bardziej precyzyjną, odtwarzalną i ilościową metodą niż ilościowa PCR w czasie rzeczywistym (qPCR), szczególnie w próbkach z niskim obciążeniem wirusowym21.

Wykrywanie DNA CMV w suchych kropelkach krwi (DBS) zostało zaproponowane jako sposób oceny ryzyka, że płód może rozwinąć infekcję lub chorobę22. Jednak czułość i swoistość testu DBS PCR w porównaniu z testem śliny wynosiły odpowiednio 30,4% i 99,9%22. Te wyniki podkreślają potrzebę dalszej oceny metod o wysokiej przepustowości wykonywanych na ślinie lub innych próbkach, które można dostosować do przesiewu noworodków na dużą skalę pod kątem CMV22.

Wykorzystanie niezsynchronizowanych odczytów z szybkiego sekwencjonowania całego genomu (rWGS) oferuje opłacalne podejście do identyfikacji patogenów zakaźnych przy jednoczesnym testowaniu wariantów patogennych w genomie gospodarza23. Analiza rWGS pod kątem mikrobiologicznego DNA umożliwia laboratorium testowemu powiadomienie klinicystów w odpowiednim czasie o obecności tego patogenu przy jednoczesnej ocenie genomu gospodarza pod kątem innych stanów patologicznych23.

Pytania i odpowiedzi

Jakie badania wykonuje się w diagnostyce cytomegalii?

Diagnostyka cytomegalii obejmuje badania serologiczne (wykrywanie przeciwciał IgG i IgM), testy molekularne PCR, hodowle wirusowe oraz oznaczanie antygenu pp65. Wybór metody zależy od wieku pacjenta i stanu układu immunologicznego.

Kiedy należy wykonać test na cytomegalię u noworodka?

Test na cytomegalię u noworodka należy wykonać w ciągu pierwszych 3 tygodni życia, najlepiej w pierwszych 2 tygodniach. Testowanie po tym okresie nie pozwala odróżnić infekcji wrodzonej od nabytej po urodzeniu.

Które materiały biologiczne są najlepsze do diagnostyki CMV?

U dorosłych najczęściej bada się krew (serum). U noworodków preferowane są ślina i mocz ze względu na wysoką czułość i łatwość pobierania. W diagnostyce prenatalnej wykorzystuje się płyn owodniowy.

Czy test PCR jest lepszy od badań serologicznych?

Test PCR oferuje wyższą czułość i swoistość oraz pozwala na ilościowe określenie obciążenia wirusowego. Jest szczególnie przydatny u pacjentów immunokompromitowanych i w diagnostyce wrodzonej cytomegalii, podczas gdy badania serologiczne są odpowiednie dla immunokompetentnych dorosłych.

Jak długo po infekcji można wykryć przeciwciała przeciwko CMV?

Przeciwciała IgM pojawiają się wcześnie po infekcji i mogą utrzymywać się do roku lub dłużej u około 20% pacjentów. Przeciwciała IgG rozwijają się po IgM i pozostają wykrywalne przez całe życie.

Reklama
Reklama